Approcci metodologici e organizzativi generali alla ricerca e alla pratica educativa in zoologia dei vertebrati. Metodi di ricerca sul campo

Capitolo 13. NORME PER IL PRELIEVO DEL MATERIALE PATOLOGICO E LA SPEDIZIONE DEL MATERIALE PER LA RICERCA DI LABORATORIO

(Estratto dal Regolamento della Direzione Generale di Medicina Veterinaria del Ministero agricoltura URSS, approvato il 24 giugno 1971)

Se è necessario determinare o confermare la causa della malattia o la morte di animali (compresi uccelli, animali, api, pesci), se si sospetta una malattia infettiva o invasiva o un avvelenamento, il veterinario (paramedico) deve prendere il materiale patologico appropriato e inviarlo al laboratorio veterinario per la ricerca.

In tutti i casi di prelievo e invio di materiale, lo specialista deve essere guidato dalle regole di seguito riportate, nonché dalle relative istruzioni per la lotta alle malattie degli animali.

Prelievo e invio di materiale patologico per ricerche batteriologiche e virologiche. Il materiale patologico viene prelevato con strumenti sterili in un contenitore sterile. La superficie dell'organo (tessuto) da cui verrà prelevato il materiale patologico viene bruciata nel sito dell'incisione su una fiamma o bruciata con una piastra metallica riscaldata.

Il materiale patologico viene prelevato il prima possibile dopo la morte dell'animale, soprattutto nella stagione calda. Quando la decomposizione è iniziata, il materiale non è adatto alla ricerca.

Il materiale viene inviato al laboratorio in forma non conservata. Se è impossibile consegnare il materiale al laboratorio entro le prossime 24-30 ore, allora è inscatolato.

Per ricerca batteriologica il materiale patologico (organi o loro parti) è conservato in una soluzione acquosa al 30% di glicerina chimicamente pura. L'acqua viene presterilizzata mediante bollitura o sterilizzazione in autoclave per 30 minuti. L'olio di paraffina liquido sterile può essere utilizzato anche come conservante. Il materiale viene versato con un liquido conservante in una quantità 4-5 volte maggiore del suo volume.

Il materiale destinato alla ricerca virologica è conservato in una soluzione al 30-50% di glicerina chimicamente pura in una soluzione fisiologica di cloruro di sodio. La soluzione fisiologica viene presterilizzata in autoclave a 120°C per 30 minuti.

Piccole carcasse di animali (maiali, agnelli, vitelli), nonché carcasse di piccoli animali, vengono inviate intere in un contenitore impenetrabile.

Le ossa tubolari sono guidate intatte con le loro estremità intatte. In precedenza, vengono accuratamente puliti da muscoli e tendini e avvolti in una garza o un panno inumidito con un liquido disinfettante (soluzione al 5% di acido fenico). Cloruro di sodio ( sale da tavola) e avvolgere in lino o garza.

Gli intestini vengono liberati dal contenuto prima di essere inviati per studi batteriologici e virologici e le estremità vengono legate. Le parti dell'intestino con i cambiamenti patologici più caratteristici vengono inviate alla ricerca. Posto in barattoli con una soluzione acquosa di glicerina al 30-40% o una soluzione acquosa satura di cloruro di sodio. Il volume del liquido di conservazione dovrebbe aumentare il volume del materiale prelevato di 5-7 volte.

Le feci per la ricerca vengono inviate in bicchieri sterili, provette o barattoli, che sono coperti con carta pergamena. Dalle carcasse di animali, le feci possono essere inviate in un pezzo di intestino non aperto legato ad entrambe le estremità. Le feci devono essere consegnate al laboratorio entro e non oltre 24 ore dalla raccolta.

Quando si invia per l'esame delle aree della pelle, le parti più colpite che misurano 10 x 10 cm vengono prese e poste in un contenitore sterile sigillato ermeticamente.

Sangue, pus, muco, urina, bile e altro materiale patologico liquido per studi batteriologici e virologici vengono inviati in pipette Pasteur sigillate, provette sterili o in fiale ben chiuse con tappi di gomma sterili.

I vetrini vengono fatti bollire per 10-15 minuti in una soluzione acquosa di soda all'1-2%, quindi lavati accuratamente acqua pulita, asciugati e posti in una soluzione di alcool ed etere, presi in parti uguali, dove vengono conservati fino al momento dell'uso.

Il sangue viene prelevato da una vena padiglione auricolare o il bordo dell'apice dell'orecchio, negli uccelli - dalla superficie della cresta o dalla vena ascellare. I capelli vengono tagliati nel sito del prelievo di sangue, la pelle viene pulita con tamponi di cotone inumiditi prima con alcool e poi con etere. Gli strumenti (aghi, bisturi) devono essere sterili.

La prima goccia di sangue viene rimossa con un batuffolo di cotone sterile (si fa un'eccezione quando si esamina il sangue per la piroplasmidosi, quando la prima goccia di sangue viene prelevata per uno striscio) e la successiva goccia liberamente sporgente viene prelevata su un vetrino precedentemente preparato da toccando velocemente e leggermente la goccia con la superficie del vetro. Quindi il bicchiere viene rapidamente girato verso l'alto di una goccia e tenuto tra le dita della mano sinistra in posizione orizzontale... Le goccioline vengono toccate sul bordo sinistro con un angolo di 45 ° con il bordo lucido di un altro vetro per microscopio (o coperchio). Non appena la goccia si distribuisce uniformemente sul bordo di questo bicchiere, viene rapidamente trasportata sulla superficie del vetrino da sinistra a destra, non portandola al bordo di 0,5-1 cm La larghezza delle macchie dovrebbe essere più stretta rispetto alla diapositiva. Viene prelevata una nuova goccia di sangue per ogni nuovo striscio.

Gli strisci di sangue finiti vengono asciugati solo all'aria. Nella stagione fredda, le macchie vengono prese in una stanza calda o su bicchieri riscaldati sul coperchio di uno sterilizzatore caldo.

Il metodo di fissaggio delle macchie dipende dallo scopo dello studio.

Gli strisci di sangue adeguatamente preparati devono essere sottili, uniformi e di lunghezza sufficiente. Su macchie e impronte essiccate oggetto tagliente fare un'iscrizione indicando il numero o il nome dell'animale e la data di preparazione dello striscio.

I tamponi di tessuti, pus, organi e secrezioni varie vengono preparati stendendo il materiale su un vetrino con un bastoncino sterile o il bordo di un altro vetrino in uno strato sottile. Particelle di organi di consistenza densa, noduli duri e materiale viscoso sono racchiusi tra due vetrini e strofinati. Quindi i bicchieri vengono separati allontanandoli in direzioni opposte in direzione orizzontale. Risultano due tratti piuttosto sottili. A volte vengono realizzate stampe. Per questo, un pezzo dell'organo ritagliato con un bisturi affilato viene afferrato con una pinzetta e diverse stampe sottili vengono eseguite sul vetro con la superficie libera del pezzo.

Prelievo di materiale per la ricerca anatomopatologica. Il materiale viene prelevato da cadaveri freschi o animali uccisi entro e non oltre le 12 e in estate - 2-3 ore dopo la morte da quegli organi o tessuti in cui si riscontrano alterazioni patologiche, nonché dai principali organi parenchimali. Piccoli pezzi sottili (non più di 1 - 2 cm di spessore) vengono tagliati da diverse parti degli organi patologicamente alterati (tessuti). Insieme alle aree colpite, i tessuti catturano anche il tessuto normale adiacente ad esso. Quando si asporta un pezzo, viene presa in considerazione la struttura microscopica (struttura) di un organo (tessuto). Quindi, pezzi dal rene, dalla ghiandola surrenale, linfonodo preso in modo tale che entrambi gli strati cadano: corticale e cerebrale; dal cervello - grigio e sostanza bianca; dalla milza - polpa bianca e rossa; dal polmone - parti dell'organo con i bronchi e la pleura. Diversi pezzi vengono prelevati dal cuore: dai muscoli dei ventricoli destro e sinistro, dagli atri destro e sinistro, dai muscoli papillari e dalla regione valvolare. Da tutti gli organi durante l'escissione, viene catturata anche la loro capsula. Da diversi reparti tratto gastrointestinale si ritagliano piccoli pezzi di 2 x 3 cm e, prima dell'immersione nel liquido di fissaggio, vengono tesi su cartoncino e cuciti con fili bianchi.

Il materiale prelevato viene posto in un liquido di fissaggio (10% soluzione acquosa formalina neutra), il cui volume è 4-5 volte il volume del materiale prelevato. Nella stagione fredda, per evitare il congelamento durante la spedizione, il materiale profilato in formalina viene trasferito in una soluzione di glicerina al 30-50% (preparata in una soluzione di formalina al 10%), in alcool al 70% o in una soluzione satura di cloruro di sodio.

Se non c'è formalina, come liquido di fissaggio viene utilizzato alcol etilico al 96% o acetone. Quando si utilizza l'alcol, lo spessore dei pezzi non deve superare 0,5 cm.Per gli studi istochimici, il materiale patologico può anche essere fissato nel liquido di Carnoy (alcol assoluto - 60 ml, cloroformio - 30 ml e ghiacciato acido acetico- 10 ml) o nel liquido di Buena (acido picrico concentrato - 15 ml, formalina - 5 ml, acido acetico glaciale - 1 ml). Il liquido di fissaggio viene cambiato ogni giorno fino a quando non diventa limpido. La temperatura di fissaggio ottimale è 37 ° C.

Il materiale patologico è fissato nel vetro o, in casi estremi, nella terracotta.

Su un vasetto viene incollata un'etichetta con pezzi di organi e tessuti, sulla quale è indicato il numero o soprannome dell'animale e a chi appartiene, e al suo interno viene posto un pezzo di carta spessa o di cartone con scritto il numero dell'animale su di esso con una matita semplice (non chimica).

È possibile inserire nei piatti più oggetti di studio di animali diversi solo se ciascuno di essi è legato con una garza insieme a un'etichetta separata.

Imballaggio e spedizione di materiale patologico. Carcasse di animali di piccola taglia, parti di carcasse di animali di grossa taglia e singoli organi in forma fresca (non fissata), vengono inviati per la ricerca al laboratorio solo tramite corriere. Materiale inviato, in particolare da animali sospettati della malattia malattia infettiva, sono accuratamente imballate in una stretta scatola di legno o metallo per evitare la possibilità di diffondere l'agente patogeno lungo il percorso. Prima dell'imballaggio, il materiale viene avvolto in una tela o una tela imbevuta di soluzione disinfettante(creolina fenolica, lisolo, latte di calce), avvolti in cellophan o pellicola trasparente e riposti in una scatola con trucioli, pula o segatura.

Parti di organi, liquidi, inviati al laboratorio per posta in forma fissa o in scatola, sono posti in un contenitore di vetro ermeticamente chiuso con un tappo di vetro smerigliato, plastica, gomma o sughero. Il sughero è fissato con filo o spago e riempito con stucco di Mendeleev (ceralacca, catrame, paraffina o cera) in modo che il sughero sia impermeabile ai liquidi. I piatti sigillati vengono messi in una scatola saldamente abbattuta, ben coperta con cotone idrofilo, stoppa, trucioli, segatura o altro materiale di imballaggio.

In caso di invio per posta o corriere di materiale patologico proveniente da animali sospettati di avere una malattia infettiva, o materiale chiaramente infetto, l'imballaggio deve garantire che il materiale sia consegnato integro ed escludere la possibilità di dispersione di agenti infettivi. Sul lato anteriore del pacco, in alto dovrebbero esserci le iscrizioni: "Attenzione - vetro" e "Top".

Vetreria, che contiene il materiale inviato con il sospetto della presenza di malattie particolarmente pericolose (movite, antrace, carbonchio enfisematoso, brucellosi, tularemia, peripolmonite di grandi bestiame, peste bovina, peste suina, pseudo peste aviaria, afta epizootica, rabbia), devono essere imballati in una scatola di metallo, sigillata, sigillata o sigillata, e quindi imballata in una scatola di legno.

Se tale materiale viene spedito a mano, viene posto in un contenitore di vetro, ermeticamente chiuso e posto in una cassa di legno.

Prelievo e invio di materiale patologico in caso di sospetto avvelenamento. I seguenti sintomi possono causare il sospetto di avvelenamento:

a) l'odore caratteristico del contenuto dello stomaco (mandorla amara, aglio-cloroformio, ecc., con esclusione dell'odore dei farmaci utilizzati);

b) colore del contenuto dello stomaco: giallo (dagli acidi nitrico e picrico, sali di cromo), verde, blu (dai sali di rame) o un altro colore;

c) contenuto dello stomaco sanguinante;

d) inclusioni sospette nel contenuto dello stomaco - cristalli bianchi di cloruro mercurico e stricnina, cristalli bianchi non disciolti di arsenico;

e) colore grigio-giallo gonfio, ingrossato, flaccido, che scoppia facilmente, ecc. La mucosa dello stomaco, dei reni, del cuore;

f) sconfitta delle divisioni iniziali tratto digestivo (cavità orale, esofago, stomaco);

g) cambiamento di colore e consistenza del sangue.

Se si sospetta un avvelenamento, il materiale dei cadaveri di animali morti viene inviato al laboratorio per studi chimici e istologici. Allo stesso tempo, per determinare la fonte di avvelenamento, viene inviato tutto il mangime (1 kg di mangime di ogni tipo) che è stato somministrato agli animali. Assicurati di inviare i resti di mangime dal trogolo.

Per la ricerca chimica, il seguente materiale viene inviato al laboratorio in banche separate:

a) parte dell'esofago e parte interessata dello stomaco con contenuto (nella quantità di 0,5 kg) e da bovini e piccoli ruminanti e cammelli - parte dell'esofago, abomaso e una piccola quantità di contenuto da diversi punti del abomaso, rumine.

Lo stomaco e il suo contenuto vengono presi nel seguente ordine.

Autopsia dopo l'esame organi interni legare l'esofago e duodeno vicino alla parete dello stomaco (due legature) e tagliare tra di loro. Lo stomaco viene rimosso e posto in cuvette, quindi aperto. Il contenuto dello stomaco viene preliminarmente (senza rimuoverlo dallo stomaco) mescolato (non si possono usare oggetti metallici), dopo di che, con attenzione, per non contaminare, ne prendono una parte;

b) segmento intestino tenue(fino a 40 cm di lunghezza) nella parte più colpita, insieme al contenuto (fino a 0,5 kg);

c) un segmento dell'intestino crasso (lungo fino a 40 cm) nella parte più colpita, insieme al contenuto (fino a 0,5 kg);

d) parte del fegato (0,5-1 kg) con cistifellea(da animali di grossa taglia), fegato intero (da animali di piccola taglia);

f) urina nella quantità di 0,5 litri;

g) muscoli scheletrici nella quantità di 0,5 kg.

Inoltre, a seconda delle caratteristiche del presunto avvelenamento, inviano inoltre:

a) in caso di sospetto di avvelenamento attraverso la pelle (per iniezione) - una parte della pelle, delle fibre e dei muscoli dal sito della presunta iniezione del veleno;

b) se sospetti un avvelenamento da gas (disolfuro di carbonio, ecc.) - la parte più a sangue pieno del polmone (nella quantità di 0,5 kg), la trachea, parte del cuore, 200 ml di sangue, parte della milza e cervello. Da piccoli animali (incl.<9к числе и от птиц) берут органы целиком.

Quando si apre un cadavere di un animale scavato nel terreno, prendere: organi interni conservati in quantità fino a 1 kg; muscoli scheletrici nella quantità di 1 kg, macinati sotto il cadavere 0,5 kg da due o tre punti.

Per l'esame istologico inviare piccoli pezzi, delle dimensioni di 1 x 3 x 5 cm, dei seguenti organi: fegato; reni (necessariamente con la presenza di strati corticali e midollari); cuori; polmone; milza; linguaggio; esofago; stomaco; intestino tenue e crasso; muscoli scheletrici; linfonodi; cervello (metà del cervello in un barattolo sterile).

I pezzi vengono prelevati dalle aree interessate degli organi e al confine con essi dalla parte non interessata del tessuto e posti in una soluzione di formalina al 10% (basata su 1 parte del materiale patologico, 10 parti di soluzione di formalina).

Se c'è il sospetto di avvelenamento con sostanze usate per combattere i parassiti agricoli, fertilizzanti minerali, vernici, i loro campioni vengono inviati in una quantità da 100 a 1000 g.

Da animali malati, se si sospetta un avvelenamento, inviare: vomito, preferibilmente le prime porzioni; urina (tutta la quantità ottenuta); feci in una quantità di 0,5 kg; il contenuto dello stomaco, ottenuto attraverso il tubo esofageo; mangimi e sostanze che potrebbero causare avvelenamento.

Se si sospetta che l'avvelenamento sia avvenuto a seguito del consumo di piante velenose, prelevare campioni di piante per l'analisi botanica. Per questo, un telaio in legno con una dimensione interna di 1 m2 viene posizionato sul supporto erboso di prati o pascoli in luoghi di pascolo del bestiame. Tutte le piante all'interno del telaio vengono tagliate alla radice. Se l'erba è dello stesso tipo, si preleva un campione da 1 ettaro di prato o pascolo in 3-5 posti, con un diverso tipo di erba, si aumenta il numero di campioni in modo da coprire meglio piante diverse e un campione medio è inviato.

Se un campione di erbe "preso per la ricerca può essere consegnato al laboratorio entro poche ore, l'erba viene inviata cruda. In caso contrario, i campioni vengono essiccati e consegnati asciutti. I campioni di erbe vengono inviati in cassette o ceste di vimini".

I campioni vengono prelevati da un veterinario o da uno specialista del bestiame.

Il materiale prelevato per la ricerca chimica non deve essere lavato e tenuto insieme ad oggetti metallici; viene inviato in una forma pulita e non preconfezionata. Il materiale di origine animale viene conservato solo se consegnato al laboratorio non prima di 3-4 giorni dalla raccolta. Per preservare il materiale, l'alcol rettificato viene utilizzato nel rapporto tra 1 parte di alcol e 2 parti del materiale. Contestualmente viene inviato un campione di alcol (almeno 50 g) con il quale viene conservato il materiale.

È impossibile utilizzare due conservanti, poiché essi stessi sono veleni (cloroformio) o distruggono alcuni veleni (formalina).

Il materiale è confezionato in barattoli di vetro o argilla puliti a collo largo, chiusi ermeticamente con tappi di vetro macinati e, se non ci sono tali tappi, con tappi di sughero puliti e non utilizzati o carta da lettere o cerata pulita.

Sopra il tappo di sughero, il barattolo è avvolto con carta pulita, legato con spago sottile (o filo spesso e forte), le cui estremità sono fissate con un sigillo di ceralacca.

Ad ogni vasetto è attaccata un'etichetta, sulla quale si scrivono con inchiostro quali organi e in quale quantità (in peso) sono posti nel vasetto, il tipo e il nome dell'animale, le date di morte e autopsia dell'animale, indicano quale si sospetta il tipo di avvelenamento e a chi appartiene l'animale.

Il materiale prelevato viene inviato immediatamente al laboratorio tramite corriere.

La procedura per l'elaborazione e l'invio dei documenti di accompagnamento al materiale inviato per la ricerca. Per ogni materiale inviato al laboratorio, viene compilato un documento di accompagnamento nel modulo, secondo l'allegato n. 1 del presente regolamento.

La lettera di presentazione viene inviata in busta chiusa (insieme al materiale) tramite posta o corriere.

La lettera di accompagnamento indica: il tipo, il sesso e l'età dell'animale da cui è stato prelevato il materiale per lo studio, il suo numero o nome, quante lattine con il materiale, per quale studio viene inviato il materiale, una breve descrizione della clinica segni e alterazioni patologiche.

Quando si inviano campioni di mangime, indicare il nome, la data del campionamento, da quale sito. Se il feed proviene da una fabbrica o da un punto di approvvigionamento, indicare da quale.

Se necessario, si presumono ulteriori informazioni alla lettera, in particolare, che tipo di assistenza è stata fornita all'animale, quali farmaci sono stati utilizzati, a che ora hanno nutrito gli animali, ecc. Quando si invia materiale da un bacino di pesca, clinica e sono indicati i dati epizootici.

La lettera di accompagnamento per i campioni di sangue (strisci) inviata di routine per la ricerca sierologica o ematologica è accompagnata da un elenco di campioni in duplice copia.

Modulo di accompagnamento per materiale patologico

Obbiettivo: studiare le regole di sicurezza, i requisiti per la preparazione, l'organizzazione e lo svolgimento di escursioni nella natura, imparare a pianificare, condurre e registrare osservazioni, conoscere i metodi di base della ricerca zoologica e i metodi di raccolta dei vertebrati.

Attrezzature e materiali: programma di lavoro della pratica educativa in zoologia dei vertebrati, programma del processo educativo di formazione degli studenti nella specialità 050102 "Biologia" nell'anno accademico in corso, norme di sicurezza, dispositivi per l'osservazione del tempo (banderuola, nefoscopio, barometro aneroide, densimetro, termometri, pluviometro Tretyakov, pluviometro volumetrico, anemometro portatile), bussola, navigatore GPS, contapassi, curvimetro, binocolo, tablet, matite, righello, metro a nastro, diario di pratica sul campo, diario di pratica sul campo, base e aggiuntivo letteratura sulla pratica educativa.

Lavoro 1.Studio del programma di lavoro della pratica educativa in zoologia dei vertebrati

Lavoro 2.Studio delle norme di sicurezza durante il periodo di formazione in zoologia dei vertebrati

Studiare le regole di sicurezza, fare una sinossi.

Conoscere lo stato dell'ambiente nell'Oblast di Vologda, usando l'Atlante ... (1995) e con la zonizzazione paesaggistica-epizootica del territorio dell'Oblast di Vologda (Radchenko, 2007), fare un elenco di malattie focali naturali particolarmente pericolose , scoprilo al posto di pronto soccorso del ChSU e annota il programma di vaccinazione dall'encefalite da zecche per gli studenti universitari.

Conoscere le seguenti malattie focali naturali e la loro prevenzione: tularemia, febbre emorragica con sindrome renale (HFRS), leptospirosi, encefalite da zecche (primavera-estate), borreliosi da zecche (malattia di Lyme).

Lavoro 3. Studio dei requisiti per la preparazione, l'organizzazione e lo svolgimento delle escursioni

Leggi il materiale del lavoro e rispondi alle domande: quali fasi si distinguono nel lavoro di escursione? Che tipo di lavoro svolgono l'insegnante e il tirocinante in ogni fase?

La principale forma di lavoro nella pratica sul campo nella zoologia dei vertebrati sono le escursioni nella natura. Hanno un grande valore educativo. Sotto la guida di un insegnante, gli studenti di biologia imparano a osservare gli animali nel loro ambiente naturale, a conoscere la fauna dei vertebrati di una particolare regione. Con la corretta organizzazione delle escursioni, gli studenti potranno imparare a riconoscere gli animali dal loro aspetto, voce, tracce di attività, stabilire le loro relazioni biotopiche e trofiche, luogo e ruolo nelle biocenosi. Durante le escursioni, gli studenti acquisiscono le capacità di osservare gli animali, le capacità di condurre escursioni zoologiche, che in futuro possono essere applicate in lavori indipendenti durante il completamento di corsi e lavori di diploma, nonché nel loro lavoro pedagogico con gli scolari.

Le escursioni nella natura sono condotte con gruppi di studenti da 10 a 12 persone. Questo numero di studenti pro capite è previsto dalle precauzioni di sicurezza durante lo svolgimento di escursioni ed escursioni nella natura con studenti e scolari. E, naturalmente, più persone rendono difficile osservare animali cauti e mobili. Ogni escursione è pianificata e preparata in anticipo. L'insegnante determina l'argomento principale della prossima escursione, ad esempio: animali nei boschi o nei prati. Allo stesso tempo, dovrebbe tenere a mente che qualsiasi escursione sarà più o meno complessa. Ad esempio, durante un'escursione in un bosco misto, si incontreranno rappresentanti delle classi di uccelli, mammiferi, anfibi e rettili. Durante la preparazione di un'escursione, l'insegnante, utilizzando una mappa o una piantina dell'area, traccia il percorso principale, lo percorre in anticipo, contrassegna eventuali oggetti per l'osservazione: tracce, morsi, pellet, nidi, tane, ecc. Dovrebbe immaginare che tipo di animali (specie comuni e comuni) si possono trovare durante l'escursione. Preparare in anticipo attrezzatura e abbigliamento. Per osservare uccelli e animali di grossa taglia è necessario un binocolo da campo (ingrandimento minimo 7-8x). È necessario disporre di un set di attrezzature: una bussola, un piano del terreno o una mappa dettagliata, strumenti di misura (calibro a corsoio, righello, metro a nastro lungo 10 - 20 m). Per raccogliere tracce di attività animale: pellet, vecchi nidi, ecc. - è necessario munirsi di zaino e contenitori da imballaggio - scatole, borse e carta da giornale. È auspicabile disporre di una macchina fotografica (videocamera), registratore portatile (dittafono) per registrare e riprodurre le voci degli animali. Nelle escursioni sono richieste guide di campo per uccelli (mammiferi, ecc.) con immagini a colori degli animali.

L'escursione si effettua quando il tempo è favorevole. Non dovresti condurre un'escursione con forti piogge, temporali, vento forte. Si consiglia di scegliere un momento della giornata in cui gli animali sono più attivi e più facili da osservare.

Il tour è diviso in più parti: parte introduttiva, parte principale e sintesi. All'inizio dell'escursione, l'insegnante fa una breve introduzione, fa conoscere agli studenti lo scopo dell'escursione, la sua durata e un percorso approssimativo. Durante la prima escursione, gli studenti dovrebbero conoscere la posizione geografica, il rilievo, l'idrografia dell'area, i suoli, la vegetazione. L'insegnante richiama l'attenzione degli studenti sul cambiamento dei paesaggi naturali in relazione alle attività economiche delle persone, ricorda le regole di condotta nelle escursioni, spiega l'importanza della loro rigorosa osservanza; mostra come utilizzare correttamente il binocolo per rilevare rapidamente un animale in movimento a notevole distanza, come avvicinarsi con discrezione per esaminare, ascoltare, disegnare, fotografare. Gli studenti determinano visivamente e annotano su quaderni lo stato del tempo: la chiarezza del sole, il grado e la natura della nuvolosità, la presenza o l'assenza di nebbia, foschia, precipitazioni, la direzione e la forza del vento. L'insegnante spiega come il comportamento degli animali può cambiare sotto diversi parametri ambientali. Dopo una breve conversazione introduttiva, il gruppo fa un'escursione. È importante osservare un certo ordine di seguire durante l'escursione: l'insegnante cammina davanti, gli studenti lo seguono in un gruppo compatto. Quando viene trovato un animale, l'insegnante fa segno a tutti di fermarsi e prestare attenzione all'oggetto osservato.

Durante l'escursione, l'insegnante parla solo di ciò che è in grado di osservare. I risultati dell'escursione rappresentano ciò che gli studenti hanno potuto vedere, ascoltare, disegnare, misurare (fotografare, riprendere con una macchina fotografica), scrivere su un quaderno. L'insegnante dà solo piccole spiegazioni dei fenomeni osservati. La base dell'escursione sono le osservazioni e il piccolo lavoro indipendente degli studenti. Esaminano, definiscono, misurano, disegnano diagrammi. Gli appunti sono brevi, e successivamente in laboratorio, durante l'elaborazione camerale del materiale raccolto, gli studenti decifrano le note di campo. Utilizzando apposita letteratura, ogni studente redige un diario di pratica sul campo, in cui inserisce tutte le informazioni raccolte ed elaborate in laboratorio. È necessario descrivere accuratamente il percorso, l'ambiente naturale (rilievo, vegetazione, ecc.), lo stato del tempo, il numero di turisti incontrati, ecc. durante ogni escursione. Queste descrizioni di solito precedono tutte le altre visite guidate. Solitamente l'escursione dura 3 - 4 ore, durante le quali i tirocinanti percorrono 3 - 7 km.

Particolare attenzione dovrebbe essere prestata al riconoscimento degli animali in natura dal loro aspetto, voci, tracce di attività. Le registrazioni del canto degli uccelli (ad esempio, pubblicate sul sito Web http // www.ecosystema.ru) possono essere di grande beneficio nell'addestramento. Puoi anche utilizzare le registrazioni su nastro delle voci degli uccelli durante le escursioni, ad esempio nella foresta, per attirare specie nascoste.

Alla fine dell'escursione si riassumono i risultati, si annotano tutte le specie animali osservate, si specifica il periodo fenologico della loro vita, si annotano specie rare, comuni e numerose.

Lavoro 4. Metodi di ricerca sul campo in zoologia dei vertebrati

Rivedere le informazioni fornite nel lavoro e, utilizzando la letteratura indicata alla fine del manuale, rispondere alle domande e completare i compiti.

Quanto sono importanti i metodi di ricerca per la pratica sul campo educativo? Quali sono i principali gruppi di metodi di ricerca sul campo solitamente studiati nel quadro della pratica educativa?

Elencare i principali metodi di ricerca faunistica.

Quali metodi sono chiamati metodi diretti di studio degli animali e quali sono indiretti?

Cosa si intende per protocolli di osservazione?

Quali sono i requisiti per la registrazione delle osservazioni?

Fornisci un esempio del contenuto della scheda di osservazione più semplice.

Quali sono le principali tipologie di diari di campo?

Quale programma Windows viene utilizzato per tenere traccia delle osservazioni? Quali informazioni contengono le tabelle di tali diari?

Quali materiali grafici sono integrati con registrazioni di escursioni di osservazioni?

Elencare l'insieme di attrezzature e attrezzature personali, compresi gli strumenti chirurgici, necessari per l'addestramento in zoologia dei vertebrati.

In quale forma vengono conservati i vertebrati per scopi scientifici e didattici?

Leggi il diario di Charles Darwin durante il suo viaggio sulla nave "Beagle" come esempio del lavoro di uno scienziato naturale.

Che cos'è il tempo? Quali elementi del tempo si distinguono nel caratterizzarlo? Quali dispositivi vengono utilizzati per determinare la temperatura, l'umidità, la pressione dell'aria? Quali strumenti determinano la velocità, la direzione e la forza del vento?

Quali parametri dei fattori meteorologici sono ottimali e quali sono critici per insettivori, roditori murini, mustelidi miofagi, mustelidi ittiofagi, ungulati?

Come si esegue il movimento azimutale?

Come funzionano con un contapassi e un curvimetro?

Che posto occupano le carte geografiche e i diagrammi nel lavoro zoologico? In quali fasi delle escursioni zoologiche vengono utilizzati e per quali scopi?

Il valore della metodologia per il buon esito dell'escursione e del lavoro di ricerca. Il successo dell'escursione pianificata e del lavoro di ricerca è in gran parte determinato dalla metodologia scelta correttamente. Per metodologia si intende l'insieme di tecniche volte a risolvere un particolare problema scientifico.

Tappe dell'escursione e della ricerca. L'escursione e la ricerca vengono svolte in più fasi: preparatoria, raccolta di materiale sul campo, elaborazione d'ufficio, generalizzazione, uso pratico dei risultati ottenuti (in particolare, in corsi o in un corso scolastico di biologia). La sequenza delle fasi può essere diversa, le fasi possono essere ripetute nel processo di adeguamento del lavoro di ricerca e dell'escursione.

Protocolli di lavoro e diari di osservazione. La registrazione delle osservazioni è estremamente importante negli studi sul campo dei vertebrati terrestri e acquatici. Solo il fatto registrato ha un vero valore scientifico e costituisce un vero e proprio documento. Le osservazioni devono essere registrate immediatamente dopo l'osservazione, in nessun caso basandosi sulla memoria (anche con una memoria eccezionale, l'abbondanza di varie impressioni può influenzare l'accuratezza e l'affidabilità della fissazione ritardata di ciò che è stato visto). In questo caso, puoi registrare prima su un dittafono, quindi trasferirlo su supporto digitale o cartaceo. Le registrazioni dovrebbero distinguere tra fatti e ipotesi, ipotesi e informazioni consolidate consolidati raccolte intervistando altri.

Esistono diversi modi per registrare le osservazioni, ma indipendentemente da quale viene utilizzato, è necessario seguire alcune regole generali:

prendere appunti immediatamente o subito dopo l'osservazione;

registrare l'osservazione con la massima precisione e chiarezza;

indicare sempre la data, l'ora, il luogo e le condizioni di osservazione;

l'iscrizione deve essere leggibile, se possibile senza abbreviazioni; se vengono utilizzate abbreviazioni, vengono decifrate immediatamente al ritorno dall'escursione.

Una presentazione attenta e ordinata dei record rende estremamente facile la loro successiva elaborazione. Come diario da campo, è conveniente utilizzare quaderni con carta spessa, copertina rigida, di dimensioni circa 8 × 11 cm Con queste dimensioni, il diario si adatta liberamente alla tasca di una giacca da campo. La scrittura viene eseguita con una matita semplice morbida (2M, B, HB) o una penna a sfera, preferibilmente su un lato del foglio. I diari sono numerati e sulla prima pagina viene apposta un'iscrizione indicante il periodo di osservazione, il nome e l'indirizzo dell'autore, con richiesta di restituzione in caso di smarrimento.

Il tipo più comune di diario è diario cronologico. Viene spesso chiamato diario delle voci primarie... In esso, le osservazioni sono registrate quotidianamente e in ordine. All'inizio della registrazione vengono indicati la data e il giorno della settimana, quindi viene data una breve descrizione del meteo, quindi il percorso dell'escursione per la giornata e, infine, una descrizione dettagliata delle osservazioni effettuate. Tale diario ha i vantaggi che registra in dettaglio il corso e le condizioni di lavoro, riflette accuratamente la sequenza di sviluppo dei fenomeni stagionali, che consente di formare un'idea chiara degli schemi generali in natura in diversi anni. E la stessa tecnica di registrazione in questo caso è la più semplice possibile. Un grave svantaggio dei diari cronologici è la complessità del campionamento dei dati per singole specie, habitat e altri problemi.

Un altro tipo di diari - materia, o tematico... Assomiglia spesso a un diario di laboratorio, le sue pagine sono solitamente sotto forma di tabelle in cui vengono inseriti i dati. Spesso il diario viene sostituito carte formati differenti. In essi o nei diari, le informazioni su ciascun tipo o problema sono registrate in sequenza, man mano che si accumulano, in una forma precedentemente pensata e preparata. Il contenuto e la forma della scheda o tabella più semplice sono presentati di seguito.

La correzione dei record sotto forma di tabelle, in particolare nell'applicazione Microsoft Office Excel, consente di elaborare i dati per specie, biotopi, stagioni, ora del giorno, ecc. Si consiglia di compilare tali schede o tabelle subito dopo l'escursione.

Quando si effettuano le prime annotazioni nell'agenda di campo, è opportuno annotare non solo osservazioni mirate (osservazioni dell'oggetto di studio), ma anche altri fatti naturalistici, che, nella successiva analisi dei materiali di osservazione, consentiranno di fare stime e conclusioni più accurate. Il diario di Charles Darwin durante il suo viaggio sul Beagle (Darwin, 1935) può essere raccomandato come esempio di lavoro.

La moderna ricerca zoologica ed ecologica sul campo dovrebbe essere integrata con materiale grafico: mappe schematiche, disegni, fotografie e registrazioni audio e video.

Mappa o planimetria dell'area sono necessarie per il lavoro sul campo sia durante il periodo di preparazione, quando c'è una preliminare conoscenza della corrispondenza con l'area e vengono delineate le principali sezioni e percorsi, sia durante il lavoro sul campo. Pertanto, dovresti fornirti in anticipo le mappe e i piani più dettagliati e precisi o le tavolette di immagini aeree e satellitari decodificate. Nelle regioni forestali settentrionali, è possibile utilizzare i piani delle imprese dell'industria del legno con una rete di blocchi applicata, che facilita notevolmente non solo l'orientamento nel terreno, ma anche la mappatura dei dati necessari per lo zoologo. I quartieri hanno spesso lati distanti solo 1 km e, nei limiti di un quarto, si possono designare sulla pianta le cosiddette "divisioni", vale a dire. aree separate di foresta o altro terreno. Tali piani dettagliati sono di eccezionale valore e convenienza.

Utili materiali di pianificazione e cartografica possono essere ottenuti dalle autorità locali, dagli allevamenti di caccia, nonché da geologi, scienziati del suolo e geobotanici. Mappe e piani geobotanici meritano la massima attenzione a causa dell'eccezionale importanza delle comunità vegetali per la vita animale. Le mappe della vegetazione forniscono un materiale di partenza per la successiva valutazione zoologico-ecologica. Mappe e diagrammi vengono utilizzati per l'orientamento sul terreno, per tracciare percorsi, linee di rilevamento, grafici di prova, ecc. Su di essi, nonché per riprese biologiche, ad es. per applicare su di esso vari dati zoologici speciali: la distribuzione delle specie più importanti di animali, i luoghi di concentrazione di massa, lo svernamento, le migrazioni e le rotte nomadi, la densità di popolazione, il numero, l'ubicazione di tane, nidi, colonie, leccate di sale, pozze d'acqua, distribuzione delle risorse alimentari, isocrone dei fenomeni fenologici ecc.

Se diventa necessario mappare singole piccole aree, per qualche motivo particolarmente importante per il lavoro - serbatoi abitati da topo muschiato, desman o uccelli acquatici, colonie, tane o nidi, allora è necessario familiarizzare con la tecnica del rilevamento oculare, almeno in un breve riassunto (Novikov, 1949) e includere nell'attrezzatura scientifica l'attrezzatura necessaria: un tablet, una bussola, un righello triangolare, carta millimetrata, preferibilmente un contapassi.

Schizzo scientifico. Lo zoologo deve padroneggiare il minimo di tecniche di disegno sufficienti per rappresentare le informazioni necessarie. Un modello per l'utilizzo della tecnica del disegno è opera di A.N. Formozov (figura 1). Il disegno dovrebbe trasmettere schematicamente, ma con precisione, la forma e le dimensioni relative dell'oggetto. Di solito è necessario indicare la scala o le dimensioni dell'oggetto. Quando si disegnano i nidi, è importante mostrare la loro disposizione nei rami.

Riso. 1. La traccia della zampa anteriore destra della volpe, realizzata con linee e contorni (da: Formozov, 1989)

fotografare. La fotocamera è diventata parte dell'arsenale principale dello zoologo. Lo sviluppo della tecnologia digitale ha creato le basi per un'applicazione ancora più ampia della fotografia nel lavoro scientifico. Un'istantanea, adeguatamente etichettata, non è una semplice illustrazione, ma tanto un documento scientifico quanto un diario, una mappa o un oggetto da collezione. A volte una fotografia, come una fotografia dell'habitat di un animale, può sostituire una lunga descrizione e fornire comunque un'immagine più chiara di ciò che è in gioco. Le immagini biologiche devono essere fornite con eventuali scale per valutare le dimensioni degli oggetti: avvicinare un righello all'impronta, posizionare una scatola di fiammiferi, un astuccio per occhiali, ecc. Senza una scala, una fotografia perde una parte significativa delle informazioni. Per fotografare gli animali in natura, puoi usare alcune tecniche di caccia: nascondersi, fare cenno alla voce, imboscate. Buoni risultati si ottengono utilizzando un correttore. Se i fondi lo consentono, puoi utilizzare trappole fotografiche: fotocamere fisse con termocamere e rilascio elettromagnetico. Lo sviluppo delle tue abilità fotografiche di animali dovrebbe iniziare con gli animali domestici.

Attrezzatura per escursioni e spedizioni. Il successo del lavoro sul campo è in gran parte determinato dalla fornitura delle attrezzature e delle attrezzature necessarie, che possono essere trovate in dettaglio in varie monografie (vedi, ad esempio: Sabaneev, 2004).

Metodi generali di scienze naturali del lavoro sul campo. Dati spesso necessari sul microclima di nidi o tane, sulle condizioni protettive di vari habitat, parametri dell'habitat (ad esempio suolo), sullo stato delle risorse alimentari, ecc. sono ottenuti utilizzando numerose tecniche e metodi descritti in dettaglio da G.A. Novikov (1949).

Metodi zoologici generali del lavoro sul campo solitamente suddiviso in:

metodi di ricerca faunistica, che consentono di stabilire la composizione delle specie di animali che vivono nell'area di interesse;

metodi per quantificare le popolazioni;

metodi per lo studio della riproduzione dei vertebrati;

metodi di studio della nutrizione animale;

metodi di studio e registrazione dell'attività animale;

metodi per studiare i movimenti stagionali degli animali, in particolare - le migrazioni degli uccelli (Novikov, 1949). Tutti questi gruppi di metodi hanno caratteristiche specifiche quando si studiano rappresentanti di diverse classi di vertebrati: ciclostomi, pesci ossei, anfibi, rettili, uccelli e mammiferi. Nell'ambito della pratica della zoologia dei vertebrati, la familiarizzazione con i metodi principali viene effettuata su specie più accessibili all'osservazione.

Va notato che attualmente utilizzato metodi di contabilità quantitativa tutti i vertebrati sono generalmente divisi in due gruppi. Il primo gruppo include metodi quando si utilizza quale è determinato o la dimensione totale (totale) della popolazione di qualsiasi specie (ad esempio, a seguito di un conteggio completo degli animali nelle colonie di mare), o la densità di popolazione di una specie - il numero di individui per unità dell'area di indagine (ad esempio, a seguito di una cattura completa di animali a siti di prova). Sono chiamati metodi di censimento assoluto. Il secondo gruppo combina metodi che ci consentono di determinare l'abbondanza relativa (abbondanza relativa) di una specie - il numero di individui per qualsiasi unità di misura convenzionale: distanza, tempo, numero di incontri per escursione o altri indicatori. Ad esempio, spesso contano il numero di uccelli per un chilometro di percorso, per un'ora di escursione o di osservazione in un punto, la percentuale del numero di incontri di una determinata specie sul numero totale di incontri di tutte le specie per un certo tempo o a una certa distanza. Metodi contabili relativi solitamente utilizzato nello studio della fauna per ottenere informazioni sulle preferenze biotopiche di singole specie o gruppi di specie. Sono anche divisi in due gruppi. Il primo gruppo include metodi di contabilità indiretta relativa, il secondo gruppo - metodi di contabilità diretta relativa. Ad esempio, il gruppo di metodi di contabilità indiretta relativa comprende valutazione del numero di animali mediante indicatori biologici. A causa del fatto che gli uccelli rapaci-miofagi cambiano il loro habitat a seconda dell'abbondanza (numero) di piccoli mammiferi che li servono come cibo, questi uccelli possono essere usati come indicatore della densità di popolazione di piccoli animali (Formozov, 1989). metodo di contabilizzazione di anfibi e roditori murini con recinzioni guida con coni di cattura.

I principali metodi utilizzati per stabilire la composizione delle specie della fauna sono osservazione direttaio sonoe definizioni di animali in natura... L'osservazione della fauna selvatica non è sempre facile, poiché molti sono riservati e diffidenti o notturni. Per osservare gli animali selvatici, spesso sono sufficienti un binocolo e la normale attrezzatura da campo (macchina fotografica, taccuino, ecc.). Spesso è necessario ricorrere ad attrezzature e dispositivi speciali.

Osservazione di animali selvatici effettuato sia durante le escursioni, sia guardando, seduti in un posto. Le escursioni possono essere turistiche e mirate (tematiche). Nel primo caso l'escursione si svolge lungo un determinato itinerario e il materiale viene raccolto in fila, ma solitamente ogni sortita ha un proprio scopo, a volte più o meno ampio, ma sempre derivante dal piano generale e dal programma di ricerca. Tali escursioni possono essere escursioni per studiare la composizione delle specie dei singoli biotopi, per osservare il ciclo giornaliero, per raccogliere materiale sulla nutrizione, ecc.

Se noti un animale o un uccello, allora è meglio non fermarti al primo momento, ma andare avanti, facendo finta di non aver notato l'animale. In questo caso, non è così spaventato. Quando si nasconde un animale, la cosa più importante è non fare movimenti bruschi, muoversi gradualmente, approfittando dei momenti in cui l'animale è impegnato con qualcosa, e muoversi non direttamente verso di esso, ma di lato. Quando si nascondono gli animali, è necessario monitorare attentamente la direzione del vento, poiché i mammiferi sono guidati principalmente dall'olfatto e quindi dall'udito.

Guardando. Con una sapiente scelta del luogo e del tempo di osservazione, la custodia permette di conoscere gli aspetti più intimi della vita degli animali selvatici e di ottenere dati interessanti sulla loro ecologia e comportamento. È particolarmente utile tendere agguati in prossimità di nidi, tane, luoghi di alimentazione, in prossimità di abbeveratoi e luoghi di balneazione, in prossimità di saline, sulle rive di laghi e fiumi, dove la selvaggina di montagna raccoglie sassi, su sentieri, vie di passaggio, voli, o nei luoghi di sosta durante le migrazioni. Sia le escursioni che i cani da guardia si fanno meglio al mattino presto o alla sera.

Guardare dà risultati ancora maggiori se ti applichi facendo cenno agli animali cibo, voce, ecc.

Raccolta del materiale raccolto. Catturare animali, prepararli e lavorarli per la conservazione a lungo termine, raccogliere prodotti di scarto di origine animale e conservarli sono procedure indispensabili che accompagnano la ricerca zoologica. La raccolta di animali appartenenti a diverse classi di vertebrati ha caratteristiche proprie ed è dettagliatamente descritta in appositi manuali. Nell'ambito della pratica generale in zoologia, si prevede di familiarizzare con alcune tecniche e metodi di cattura, preparazione e conservazione a lungo termine dei soli anfibi e piccoli mammiferi. Per preparare gli animali e prendere le misure necessarie, sono necessari i seguenti strumenti e materiali (Fig. 2): bilancia con pesi, righello, metro pieghevole o metro a nastro, calibro a corsoio, coltello-

Riso. 2. Alcuni strumenti per la preparazione degli animali: calibri a corsoio, pinze, pinze ad ago, bisturi, forbici, pinzette

forbici, bisturi, pinzette, raschietti per cranio, pinze o pinze a becchi tondi, lima, ceppo a grana fine, aghi e filo, carta Whatman, carta marrone, aghi inglesi, cotone idrofilo e stoppa, amido (farina di patate), sale di bario o spazzole pelose per soda, naftalene o altri insetticidi, garza, borsa da toilette o custodia per strumenti da dissezione.

Lavoro 5. Conoscenza dell'area di pratica in zoologia dei vertebrati

Consulta l'ordine del rettore della ChSU sullo stage per gli studenti che studiano nella specialità 050102 "Biologia" negli studi 2009/10. d. Utilizzando i materiali cartografici del Dipartimento di Biologia del ChSU, preparare mappe individuali dell'area o delle aree di pratica.

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Studenti, dottorandi, giovani scienziati che utilizzano la base di conoscenza nei loro studi e nel lavoro ti saranno molto grati.

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Igiene degli animali da laboratorio

introduzione

Nella pratica di laboratorio, vengono utilizzati principalmente animali di piccola taglia per scopi sperimentali: conigli, cavie, ratti, topi, criceti, ecc. Le malattie vengono studiate sugli animali, viene controllata la qualità dei vaccini e dei sieri, vengono testati nuovi farmaci chimici e altri. L'allevamento su larga scala di animali da laboratorio viene effettuato in vivai - si tratta di allevamenti specializzati, in cui vengono poste elevate esigenze sulla qualità degli animali allevati, principalmente sul loro stato di salute. Negli istituti veterinari di ricerca e formazione, nei laboratori di varie categorie e in altre suddivisioni ci sono le cosiddette suddivisioni ausiliarie del vivaio. Ha anche allevato animali da laboratorio per vari esperimenti.

1. Requisiti per il sito per la costruzione di un vivaio (vivarium)

Per la costruzione di vivai e vivai, è necessario scegliere un luogo sopraelevato con pendenza per il drenaggio delle precipitazioni atmosferiche, con terreno impermeabile, basso livello di falde acquifere e con libero accesso di aria e luce. Il sito dovrebbe essere situato lontano da allevamenti, strade, edifici residenziali ed essere circondato da una recinzione solida. È auspicabile che i cantieri siano protetti da un massiccio verde dai venti freddi prevalenti e dai cumuli di neve. È vietata la realizzazione di un vivaio sui territori di ex sepolcri bovini, discariche, concerie, magazzini per pelli grezze, ossa e lavatrici.

Per escludere la possibilità di epidemie e diffusione di malattie tra animali da laboratorio in vivai e vivai, sono previste le seguenti condizioni:

A) custodia separata obbligatoria degli animali malati e sani;

B) la presenza di locali separati per il reparto di quarantena e isolamento;

Il territorio delle aziende vivaistiche dovrebbe essere diviso in due zone isolate: produttiva ed economica.

L'area di produzione ospita gli animali, un punto di controllo veterinario e sanitario con unità di disinfezione e locali tecnici, un punto veterinario e di smaltimento. Assegnare una o più stanze isolate per l'alloggio di animali selezionati per la vendita o per animali di nuova acquisizione.

Prima dell'introduzione degli animali in una fattoria di nuova costruzione (vivarium), l'intero territorio, i locali di produzione e di servizio sono sottoposti a un'accurata pulizia meccanica e disinfezione preventiva.

Un checkpoint veterinario e sanitario deve essere situato all'ingresso dell'area di produzione dell'allevamento. All'ingresso del checkpoint veterinario e sanitario è istituita una vigilanza 24 ore su 24. Il checkpoint veterinario e sanitario assicura il lavoro dei blocchi sanitari in due modalità: 1) in caso di situazione epizootica sicura - senza il trattamento obbligatorio del personale di servizio; 2) in caso di situazione epizootica sfavorevole - con sanificazione obbligatoria del personale. Le persone che non lavorano nel nido devono sottoporsi a sanificazione obbligatoria.

Per la disinfezione dei veicoli è prevista un'unità di disinfezione. A tal fine si prevede di disinfettare le ruote dei veicoli transitanti nel territorio in una barriera di disinfezione. Di solito è pieno di segatura, che è impregnata di una soluzione disinfettante.

Nei vivai, un macello (macello sanitario) è attrezzato per la macellazione degli animali abbattuti, l'apertura e lo smaltimento dei cadaveri. Si compone di un locale di macellazione, un reparto di utilizzazione, una sala di dissezione e un reparto per la raccolta e lo stoccaggio delle pelli animali.

Nei locali del vivaio (vivarium), i pavimenti e le fondamenta dovrebbero essere impermeabili alle acque reflue, le pareti dovrebbero essere uniformi e convenienti per la pulizia e la disinfezione a umido. I locali dovrebbero mantenere un regime ottimale di temperatura e umidità: temperatura 17-18 0 С, umidità relativa non superiore al 50%. I locali sono illuminati con lampade fluorescenti.

Nella zona economica del vivaio, c'è un negozio di mangimi e strutture di stoccaggio dei mangimi. Il negozio di mangime e l'area di carico e scarico degli animali si trovano al confine delle zone economiche e produttive.

I vivari sono costruiti in edifici separati, isolati da altri locali.

Prevedono stanze "pulite", dove contengono animali non infetti con un inventario separato, e stanze dove vengono condotti esperimenti. Inoltre i vivari prevedono un blocco sanitario (un locale di ispezione sanitaria con doccia e wc), un locale di quarantena per gli animali appena arrivati, un isolatore, una sala operatoria, una sala autopsie, una sezione per il prelievo di campioni (analisi) , un reparto di disinfezione e lavaggio, nonché una sala diagnostica, locali per l'inventario pulito, una cella frigorifera per la conservazione dei cadaveri di animali, una cucina per mangimi con una stanza per la conservazione dei mangimi e la preparazione degli alimenti, un ufficio (sala specialistica), una stanza per personale di servizio, un locale separato per un'unità tecnica (apparecchi di ventilazione e riscaldamento, ecc.).

All'ingresso del vivaio e in ciascuna delle sue stanze, dovrebbero essere disposti tappetini per la disinfezione. Gli animali anfibi e i pesci destinati agli esperimenti sono solitamente alloggiati in scantinati opportunamente attrezzati.

2. Igiene della custodia, dell'alimentazione, dell'abbeveraggio e della cura degli animali da laboratorio

Gli animali da laboratorio di specie ed età diverse devono essere tenuti in locali separati. Se necessario, animali di specie diverse vengono alloggiati nella stessa stanza su lati diversi.

Su ogni gabbia, scatola, voliera, sono appesi cartelli, dove vengono registrati i dati sull'animale e il tipo di esperimento.

Gli animali da laboratorio sono tenuti in gabbie con fondo solido o pallet. Lettiera: segatura, trucioli, torba, paglia - pre-disinfettati in autoclave o in un essiccatore a una temperatura di 160-200 0 per 10-15 minuti. La lettiera viene bruciata se necessario.

Le celle vengono pulite giornalmente. Rifiuti e spazzatura dalle gabbie, la lettiera viene messa in una speciale botte di ferro con un coperchio di metallo aderente. Dopo il riempimento, i serbatoi vengono trasferiti ai reparti di disinfezione e lavaggio per la disinfezione. La pulizia, il lavaggio, la disinfezione delle celle viene effettuata in stanze speciali. I cadaveri per l'autopsia vengono conservati in frigorifero per almeno 1 giorno.

La morte o la macellazione forzata degli animali è registrata in un apposito giornale.

Alla fine della giornata lavorativa, in tutte le stanze (sezioni) del vivaio, viene eseguita la pulizia a umido del pavimento utilizzando disinfettanti (soluzioni all'1% di cloramina, idrossido di sodio, ecc.).

3. Sistemi di detenzione di animali da laboratorio

Esistono tre sistemi per la custodia e l'allevamento di animali da laboratorio: aperto, chiuso e isolato.

Sistema chiuso - con lei, gli animali da laboratorio sono tenuti in stanze speciali ben illuminate dove viene mantenuto un microclima stabile e controllato automaticamente e vengono create condizioni che prevengano l'insorgenza di malattie infettive.

Sistema isolato -applicato per la coltivazione di animali da laboratorio (gnotobionti) lineari e sterili (microbici).

Negli asili nido e nei vivai, gli animali di sesso diverso vengono generalmente tenuti separatamente. Per l'accoppiamento, le femmine vengono piantate con i maschi e non viceversa, poiché i maschi, quando vengono posti in un'altra stanza (gabbia), diventano paurosi e la loro attenzione viene distolta dalla femmina. Dopo l'accoppiamento, la femmina viene riportata al suo posto originale. Se necessario, l'accoppiamento viene ripetuto.

Le femmine fecondate devono essere accudite con cura, ben nutrite, soprattutto verso la fine della fruttificazione. Pochi giorni prima della comparsa della prole, viene preparata una gabbia separata per le femmine. La gabbia deve essere pre-pulita e disinfettata e avere una quantità sufficiente di lettiera asciutta e morbida.

Conigli, cavie, ratti, topi e altri piccoli roditori vengono posti in gabbie a seconda della specie e dell'età.

Se i conigli vengono tenuti all'aperto, è meglio costruire sezioni a due livelli, diverse sezioni di fila, sotto un comune tetto impermeabile a due oa shed. Il pavimento nelle gabbie è dotato di cremagliera o rete. Su un lato della gabbia sono disposti sia un alimentatore che un abbeveratoio. Per i conigli, vengono prese le seguenti dimensioni della gabbia in cm: lunghezza 120-130, larghezza 60-70, altezza della parete anteriore 80-90, altezza della parete posteriore 50-55. Quando si tengono i conigli in casa, è meglio realizzare gabbie metalliche con un doppio pavimento, tra le quali viene inserito un pallet. Le dimensioni di tale gabbia (cm): lunghezza 70, larghezza 45, altezza 50. Le porte sono realizzate in rete metallica con celle di 2-3 cm.

I conigli adulti vengono alloggiati uno alla volta in gabbia, gli animali giovani fino a 3 mesi. 3-5 capi di età. I conigli nelle passeggiate o nelle gabbie contengono 10-15 teste al ritmo di 0,2-0,4 m 2 per coniglio. Devono essere ordinati e gestiti per genere. Le gabbie sono dotate di pavimento in rete ad un'altezza di 60-70 cm dal pavimento della stanza e ad una distanza di almeno 45-50 cm dalle pareti.

Per i porcellini d'India vengono utilizzate gabbie a due livelli con una parte superiore chiusa, impermeabile all'umidità. Le dimensioni approssimative di una gabbia (cm): lunghezza 65 cm, larghezza 55, altezza 40.

Le gabbie per topi e ratti sono generalmente in metallo, con vassoi metallici estraibili. Lo scheletro delle celle è in ferro angolare, i lati sono in rete metallica. Le dimensioni di una tale gabbia in cm: lunghezza 50, larghezza 40, altezza 30. Le gabbie sono posizionate su 2 o 3 livelli su cremagliere in ferro angolare. Il primo livello dovrebbe essere sollevato dal pavimento ad un'altezza di 50 cm.

I cani sono alloggiati singolarmente in box separati (cabine) con una dimensione di circa 1,5 m2.

I gatti vengono posti in gabbie per 5 teste. Provvedono anche al dispositivo di scaffali, lettini. L'area per un gatto è 0,5 m 2. Prima di entrare nella voliera, viene attrezzato un vestibolo in rete.

contenuto di animali da laboratorio alimentare

4. Alimentazionee abbeverare gli animali da laboratorio

I piccoli animali da laboratorio si distinguono per un alto livello di metabolismo, intensità di crescita e sviluppo, proliferazione, breve gestazione e alimentazione della prole. Pertanto, per la normale crescita e sviluppo degli animali da laboratorio, i mangimi devono contenere tutti i nutrienti necessari per la vita: proteine, grassi, carboidrati, vitamine, macro e microelementi.

Se le regole dell'igiene alimentare non vengono seguite, gli animali da laboratorio spesso muoiono per malattie del tratto gastrointestinale.

Tutti i mangimi utilizzati per l'alimentazione degli animali da laboratorio devono essere testati entro 10 giorni per 10-20 animali da esperimento sani, che vengono posti in gabbie separate. La buona qualità del mangime è determinata in base allo stato di salute dell'animale da esperimento. Alla minima violazione, il mangime viene rifiutato e il campione viene inviato al laboratorio per la ricerca.

Il mangime concentrato deve essere setacciato prima dell'alimentazione. Legumi: fagioli, piselli, fagioli vengono lavati in acqua e messi a bagno per 2-4 ore. Avena, orzo, grano, ecc., Quando sono mangiati male, vengono cotti a vapore per 1,5-2 ore, la torta viene schiacciata, cotta a vapore e mescolata con la crusca.

Per conigli e porcellini d'India, il mangime deve essere lievito. Per questo, il grano macinato o frantumato viene posto in speciali abbeveratoi o vasche di legno.

Il lievito viene diluito in acqua tiepida (circa 30 ° C) fino a formare il latte di lievito, quindi mescolato con il mangime. La massa risultante viene lasciata all'interno per 5-6 ore a una temperatura di 18-20 ° C. La miscela viene mescolata periodicamente. Dopo nove ore, il cibo è pronto per essere mangiato.

Grano, orzo perlato, semole d'orzo vengono puliti dalle impurità prima della cottura, setacciati al setaccio. I raccolti di radice vengono puliti dalle aree interessate, lavati con acqua bollita, quindi tagliati a fette o fette: 0,7-1 cm per porcellini d'India, 1-3 cm per conigli, 0,5-0,7 cm per ratti e topi o dati in forma grattugiata. Il fieno prima dell'alimentazione viene esaminato, quelli ammuffiti, ammuffiti e marci vengono rimossi. L'erba per animali da laboratorio viene falciata al mattino o alla sera, l'erba tagliata viene essiccata all'ombra. È vietato nutrire erba incrostata, bagnata e marcia. Non è consentito cucinare mangimi bolliti per diversi giorni per l'alimentazione. È meglio nutrire gli animali da laboratorio 2 volte al giorno: al mattino e alla sera.

Gli animali da laboratorio vengono abbeverati con acqua fresca e pulita (corrispondente a GOST), preferibilmente bollita ma raffreddata. L'acqua dovrebbe essere sempre nei bevitori. Ratti e topi sono meglio serviti con latte o farina d'avena con latte.

Le dosi approssimative di mangime per animali da laboratorio dovrebbero essere basate sull'età, sullo stato fisiologico e sulla fisiologia degli animali.

La quantità di proteine ​​​​digeribili nelle diete dei ratti dovrebbe essere del 18-20% e nella dieta dei topi - almeno il 16%, nella dieta dei conigli e delle cavie - 16-20%. Il rapporto ottimale tra proteine, grassi e carboidrati nelle diete di ratti e topi dovrebbe essere 1: 1: 3 e nella dieta di conigli e porcellini d'India - 0,8 - 1: 0,6 - 0,8: 5. I fabbisogni nutrizionali di conigli e porcellini d'India sono compensati da mangimi a base vegetale. I ratti richiedono una maggiore quantità di proteine ​​animali, quindi dovrebbero essere almeno 1/3 della quantità totale di proteine ​​nella dieta.

Il valore nutritivo delle diete per le donne in gravidanza dovrebbe essere del 25-30% più alto all'inizio e del 40-50% più alto alla fine della gravidanza. Durante il periodo di allattamento delle femmine, il fabbisogno energetico delle femmine è raddoppiato. Quindi, ad esempio, nei conigli, a causa del mantenimento a lungo termine dei conigli sotto la femmina, la necessità di mangime aumenta 2 volte all'inizio della lattazione, 3 volte a metà e 4 volte alla fine della lattazione.

Va inoltre tenuto presente che alcuni animali da laboratorio assimilano diversi nutrienti del mangime, non allo stesso modo. Pertanto, conigli e porcellini d'India assorbono bene il carotene (provitamina A) contenuto nella dieta, mentre ratti e topi lo assorbono molto peggio. Pertanto, la vitamina A deve essere introdotta nella dieta sotto forma di soluzione oleosa o olio di pesce. I porcellini d'India, a differenza dei roditori, sono sensibili alla carenza di vitamina C, poiché non sono in grado di sintetizzarla nel corpo. Dovrebbero riceverlo nella dieta insieme al foraggio verde: cavoli, aghi freschi o soluzioni acquose di acido ascorbico.

Per tutti i roditori da laboratorio, l'alimento principale sono cereali, semi oleosi e legumi: avena, frumento, miglio, orzo, mais, piselli, fagioli, fagioli, girasoli e chicchi di lino. Questi mangimi sono misti o alimentati separatamente.

Durante l'anno, è necessario introdurre mangimi verdi e succosi nella dieta degli animali: carote, barbabietole da zucchero e da foraggio, rape, cavoli. I porcellini d'India hanno bisogno di cereali germogliati e cavoli nella loro dieta. I raccolti di radice vengono nutriti crudi, per i quali vengono prelavati e frantumati.

Nelle stagioni calde, i legumi e le erbe sono il cibo migliore. Per migliorare la digestione, è necessario aggiungere il fieno alla dieta. Farina di ossa, fosfato tricalcico, sale da cucina, olio di pesce, trivit, tetravit e lievito vengono introdotti nella dieta come integratori minerali e vitaminici. La fonte di vitamine C, E, K sono mangimi succosi e verdure.

È necessario nutrire gli animali secondo il programma 2-3 volte al giorno. La carne e le frattaglie sono cotte. La carne macinata è ottenuta da carne bollita. Il porridge viene bollito nel brodo di carne, i cereali vengono lavati prima di riempirli e viene aggiunto il sale. Il porridge può essere cotto nel latte o nell'acqua. Carne macinata, mangime misto, olio di pesce, farina di pesce vengono aggiunti al porridge e tutto viene accuratamente miscelato.

Per garantire la completa commestibilità del mangime è necessario alternare alcuni tipi di mangime nella razione giornaliera. Quindi, ad esempio, con tre pasti al giorno per topi, ratti e criceti, puoi dare una miscela di cereali, erbe al mattino, latte durante il giorno e cibo succoso la sera.

Per i conigli, a seconda della stagione, è possibile utilizzare i seguenti tipi di razioni: in inverno - al mattino 50% di mangime per cereali e 40% di fieno, nel pomeriggio radici e mosto umido, la sera - il restante 50% di mangime per cereali e 60% - fieno; in estate - al mattino 30% di erba e metà del mangime concentrato, durante il giorno 30% della massa verde e alla sera il resto del mangime concentrato, poltiglia umida e 40% di erba. In inverno, le cavie ricevono mangime a base di cereali, cavoli e fieno al mattino, latte nel pomeriggio e alla sera il resto dell'erba, concentrati e una poltiglia umida. Quando si alimentano conigli e porcellini d'India con mangime bricchettato, il mangime concentrato viene escluso dalla dieta.

Per conigli e porcellini d'India, puoi preparare una poltiglia umida di mangime misto, crusca, porridge, torta schiacciata con l'aggiunta di patate bollite, sale, olio di pesce, farina di pesce o carne - ossa e lievito.

21.5. Precauzioni di sicurezza e regole di igiene personale quando si lavora con animali da laboratorio.

Tutte le persone assunte per lavorare in un vivaio o in un asilo nido devono sottoporsi a visita medica ed essere istruite sulle regole per la cura, l'alimentazione e il mantenimento degli animali da laboratorio. Le persone che soffrono di tubercolosi, pelle e altre malattie infettive non possono lavorare nel vivaio (asilo nido). Tutto il personale di servizio deve periodicamente (almeno una volta all'anno) sottoporsi a visita medica.

I lavoratori del vivaio e altre persone che conducono esperimenti con animali da laboratorio infetti da malattie pericolose per l'uomo (antropozoonosi) dovrebbero essere vaccinati contro le malattie corrispondenti (rabbia, antrace, ecc.).

Il vivaio è dotato di armadietti individuali per gli abiti da casa e separatamente per gli abiti da lavoro. Gli armadietti vengono periodicamente disinfettati (almeno una volta al mese).

Un kit di pronto soccorso, sapone, asciugamani e disinfettanti per le mani dovrebbero essere disponibili in ogni stanza di lavoro e stanza in cui sono alloggiati gli animali. Tutti i lavoratori del vivaio, così come le altre persone che conducono esperimenti con animali da laboratorio, devono indossare indumenti protettivi e fare una doccia prima di iniziare il lavoro e alla fine. È vietato fumare e mangiare in tutte le aree di produzione del vivaio.

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Negli studi sperimentali, la corretta manutenzione e alimentazione degli animali da laboratorio, sia prima che durante l'esperimento, è di grande importanza.

La violazione del regime e della dieta, l'inosservanza delle misure igieniche durante l'alimentazione contribuiscono all'indebolimento del corpo degli animali e aumentano la loro suscettibilità a varie malattie infettive e somatiche. Il loro verificarsi durante l'esperimento può portare a una distorsione dei risultati della ricerca e, di conseguenza, a conclusioni errate. Nella razione alimentare devono essere introdotte tutte le sostanze necessarie all'organismo dell'animale (proteine, carboidrati, grassi, minerali, vitamine e acqua). Dai concentrati, conigli e cavie ottengono miglio, avena, frumento, orzo, piselli, lenticchie, veccia, mais. La dose giornaliera di concentrati: per conigli adulti - 80 g, per animali giovani - 60 g, per cavie - 20-25 g Si consiglia di dare agli animali una miscela di semi di più (2-3) colture nel tariffa giornaliera. Conigli e maiali possono essere nutriti con scarti alimentari (lino, girasole e torta di canapa, crusca di frumento). La torta viene alimentata al vapore e frantumata e la crusca viene nutrita con radici o torta. Le norme giornaliere di rifiuti e crusca sono 15-20 g per i conigli e 5-10 g per le cavie.

Dai mangimi succosi, a conigli e maiali vengono date carote rosse ben lavate e affettate (vitamina A), rape, barbabietole, rape e rape. L'introduzione di mangimi succosi nella dieta nel periodo autunno-inverno è obbligatoria. La norma giornaliera delle radici per i conigli è di 100-120 g, per i porcellini d'India - 80-100 g L'erba fresca e le verdure sono cibo indispensabile per conigli e maiali in estate e grano germinato in inverno. Dal foraggio grossolano si produce fieno di buona qualità, e per i conigli anche foraggio da legna (rami di tiglio, betulla, pioppo tremulo, acero, pioppo). Gli animali vengono nutriti con latte naturale (pastorizzato o bollito o acidofilo) e acqua fredda pulita. I conigli hanno bisogno di latte non solo per gli animali giovani, ma anche per le femmine in gravidanza e in allattamento.

A topi e ratti bianchi vengono somministrati avena, grano, miglio, orzo, semi di lino, canapa e semi di girasole. Per evitare l'obesità negli animali, i semi oleosi vengono introdotti nella dieta in piccole quantità. La norma giornaliera dei concentrati: 3-5 g per i topi e 12-15 g per i ratti. Nel mangime sono inclusi anche pane di frumento (il pane di segale acido può causare diarrea), fette biscottate, cereali (farina d'avena, orzo perlato, miglio), porridge di semola giovane con latte. Inoltre, la dieta comprende carote, mele Antonovka (queste ultime sono particolarmente necessarie per le malattie gastrointestinali) e alimenti verdi (lattuga, spinaci, cime di carota).

Kovalevsky consiglia di aggiungere barbabietole bollite e purè di patate alla dieta dei topi. La norma giornaliera di pane e cereali per i topi è 3-3,5 g, per i ratti - 15-20 g, cibo succoso - 0,5-1 e 2-3 g, rispettivamente, cibo verde, lavato con acqua bollita e tritato, -2- 3 e 4-6 g, latte naturale (pastorizzato o bollito per 4-5 minuti) o acidofilo - nella quantità di 4-5 g per i topi e 6-8 g per i ratti (parte del latte è usata per fare i cereali) .

Inoltre, ogni giorno tutti gli animali dovrebbero ricevere sale da cucina: topi - 0,01 g ciascuno, ratti - 0,07 g ciascuno (in porridge), maiali - 0,1 g, conigli - 0,5 g ciascuno (sotto forma di una soluzione con concentrati) e ossa pasto, in circa le stesse quantità. In ogni gabbia per topi e ratti metti un pezzo di 1-5 g) di gesso al ritmo di 3-4 giorni. Per arricchire il mangime con vitamine nel periodo autunno-inverno, danno olio di pesce, lievito secco irradiato, succo di pomodoro e maiali, inoltre, succo di ribes nero, tintura di rosa canina (vitamina C), ecc.

Assunzione giornaliera di olio di pesce: 0,5 g per conigli, 0,3 g per maiali, 0,2 g per ratti e 0,1 g per topi (con concentrati o sul pane). Paglia, torba sono usate come lettiera per i conigli; per topi e ratti - fieno poco profondo.

Gli animali vengono nutriti e abbeverati due volte, e le femmine che allattano tre volte al giorno, a un'ora fissa. Le mangiatoie sono fatte meglio di terracotta (fatta di argilla cotta), di peso sufficiente per evitare il ribaltamento da parte degli animali e conveniente per la pulizia (lavaggio). Le mangiatoie vengono pulite e lavate giornalmente con acqua calda. Ogni gabbia dovrebbe avere due mangiatoie: per concentrati e per broda. Il mangime viene fornito solo fresco.

Le condizioni di detenzione di animali da esperimento sono di grande importanza per un esperimento tossicologico. Tenere gli animali in condizioni di stress (isolamento in una scatola, fissazione approssimativa in una posizione non fisiologica) porta ad un aumento della tossicità. Anche i cambiamenti nella dieta influenzano i tassi di tossicità.

Per gli studi sperimentali nei laboratori tossicologici vengono utilizzati ratti Wistar o ratti di razza bianca, che sono albini di ratti neri (Rattus rattus) e grigi (Rattus norvegicus), nonché topi bianchi, che sono topi domestici albini (Mus musculus). Sia i ratti che i topi appartengono allo stesso ordine di roditori (Rodentia), la famiglia dei topi (Muridae).

Un importante vantaggio dei ratti bianchi come animali da laboratorio è che sono abbastanza resistenti alle malattie infettive e danno una grande cucciolata.

I ratti bianchi sono tenuti in stanze con una buona ventilazione, illuminazione sufficiente e una temperatura uniforme - 20-22 * C. I ratti di laboratorio non tollerano bene il freddo. L'umidità dell'aria nelle stanze non deve superare il 40-45%.

Segatura grossa, torba frantumata o paglia o ritagli di carta, gli stracci sono usati come lettiera per gli animali. Le cellule sono mantenute pulite. Devono essere sempre asciutti, puliti e ben aerati. Non permettere che urina e feci si accumulino al loro interno.

Oltre alla pulizia quotidiana, le celle vengono accuratamente lavate e disinfettate 1-2 volte al mese. È meglio disinfettare le cellule con acqua bollente, una soluzione calda al 5-10% di alcali caustici o agenti antimicrobici come candeggina, creolina, cloruro mercurico, formalina, ecc.

I ratti sono onnivori, quindi la loro dieta non dovrebbe essere limitata ai cibi vegetali. I ratti che non ricevono quantità adeguate di prodotti animali (latte, carne, farina di carne e ossa), minerali e vitamine smettono di crescere.

Il fabbisogno giornaliero di un topo adulto per l'alimentazione è mediamente di 30-32 g, di cui 25 g di mangime misto e 5-7 g di verdura.

I ratti vengono generalmente nutriti 2 volte al giorno. In considerazione del fatto che i ratti sono animali notturni e mangiano al buio, la maggior parte del cibo dovrebbe essere somministrata la sera, verso le 20. Non è consigliabile modificare drasticamente il regime alimentare, i ratti dovrebbero essere gradualmente abituato al nuovo cibo. L'acqua potabile deve essere pulita e fresca, si consiglia di utilizzare acqua bollita. È inoltre necessario sostituire gradualmente l'acqua con il latte, altrimenti gli animali si rifiutano di mangiare e si ammalano.

che i topi sono più sensibili agli sbalzi di temperatura, ai cambiamenti alimentari e alle malattie infettive (in particolare la salmonellosi). Nei topi, in misura molto maggiore rispetto ai ratti, si manifesta la gerarchia "sociale" nel gruppo - la lotta per la leadership, a causa della quale non è consigliabile modificare la composizione dei topi nelle cellule E.

Il fabbisogno alimentare giornaliero di un topo adulto è di E in media 9,5-10 g di cibo misto e 1-2 g di verdure.